大部分试剂（非现配现用），我们会配制高浓度的“母液”（stock solution），母液浓度是工作液的50倍，即50×，5倍，即5×
望采纳哈！
dna电泳缓冲液50×TAE ,5×TBE中的50×、5×是什么意思?
在生物学实验中，一般来说：“工作液”（working solution）浓度是1×（如果有特殊说明需要X×，那就依说明为准）大部分试剂（非现配现用），我们会配制高浓度的“母液”（stock solution），母液浓度是工作液的50倍，即50×，5倍，即5× 望采纳哈！
DNA电泳时,缓冲液的选择,何时用TAE,何时用TBE
TBE的缓冲能力比TAE大，所以，PAGE选用TBE做缓冲液（让小片段跑得慢）。琼脂糖凝胶电泳选用两种缓冲液都可以，但两种情况下最好选TAE：1)电泳片段大于13kb的片段，2)切胶回收DNA（因为TBE会与琼脂糖反映形成四羟基硼酸复合物降低DNA片段的回收率）琼脂糖凝胶电泳是水平的，PAGE是垂直的（垂直的胶加样孔...
跑胶缓冲液tae和tbe的区别
TAE是用乙酸配的，TBE是用硼酸配的。TAE对后续试验没有影响但是分辨率比较低，TBE存在硼离子会对一些酶的活性稍有影响但是分辨率较高。TAE有乙酸缓冲能力差，TBE缓冲能力比较好。当往某些溶液中加入一定量的酸和碱，或加少量水稀释时，溶液有阻碍溶液pH变化的作用，称为缓冲作用，这样的溶液叫做缓冲溶液。
电泳缓冲液的配制方法
用NaOH调pH至8.3，加去离子水定容至1L后，室温保存。使用时稀释10倍 即1×TBE Buffer
电泳缓冲液配制方法
以下是电泳缓冲液的配制方法的改写内容：首先，我们来了解50×TAE Buffer的制作步骤：在一个1升的烧杯中，精确称量Tris 242g，接着加入Na2EDTA.2H2O 37.2g。 倒入大约800ml的去离子水，然后充分搅拌，以确保所有成分充分混合。 接下来，慢慢加入57.1ml的冰乙酸，继续搅拌直至完全溶解。 最后，用...
跑SDS-PAGE的电泳缓冲液需要什么水来配制
1.配制电泳试剂用水蒸馏水就可以了就是单蒸水,如果条件允许的话,可以只用更好的当然纯水是最好了;2.一般实验室都会有蒸馏水,双蒸水,其实双蒸水就能满足大多数实验室的要求,纯水才是所谓的去离子水
TAE缓冲液
按照 242g Tris碱 57.1ml冰乙酸 100ml 0.5mol\/L EDTA（pH8.0）是配置1L 50x的缓冲液 使用的时候取决于你的容器有多大，一般用一个2L的试剂瓶的话，就是40ml储存液+水补满到2L，然后拼命混匀就可以倒进电泳槽作电泳缓冲液或者配置agarose TAE胶了 ...
请问5TBE Buffer 溶液的配方???
TBE通常作为5×或10×的贮存液配制和贮存。这种浓的贮存液pH应为8.3左右。它在应用前稀释，并用同一贮存液制备凝胶溶液和电泳缓冲液。有些研究者习惯用更浓的TBE贮存液，如10×的。但是5×的贮存液更稳定，因为贮存期间溶质不沉淀。经0.45μm滤膜过滤能防止延迟浓的贮存液沉淀的形成。参考资料：...
Te缓冲液
Tris-EDTA，简称TAE，是DNA纯化过程中常用的缓冲系统之一，尤其TAE由于其特点在电泳分析中表现出色。TAE的特点在于它能更准确地反映超螺旋DNA的实际相对分子质量，且双链线状DNA在TAE中的迁移速率比TBE快约10%，适合处理大于13kb的片段，电泳后DNA回收也更为方便。然而，TAE的缺点是缓冲容量有限，长时间...
TE、TAE、TBE缓冲液的区别
A、TE缓冲液：一般用作溶解剂或保持剂，常用于溶解DNA，能稳定储存DNA。B、TAE缓冲液:生物学中使用最广泛的核酸电泳缓冲液，主要用于DNA的琼脂糖凝胶电泳。C、TBE缓冲液：生物学中常用的核酸电泳缓冲液，主要用于DNA的琼脂糖凝胶电泳。3、TAE和TBE缓冲液的选择：TAE和TBE缓冲液都可以用于DNA的琼脂糖...
