提取的DNA在电泳过程中出现严重的拖尾是什么原因
过多。2、电泳体系的问题:(1)电泳缓冲液TAE或者TBE的污染,建议更换缓冲液。(2)上样时样品漂了,建议增加上样缓冲液的用量,以及小心加样。(3)电压太高。(4)适当把你的胶的浓度加大。(根据你的片断大小而定)(5)观察你的marker是否也存在拖尾现象,作为对照。
dna提取中电泳检测有拖带是什么原因
有拖尾一般是降解了,应该考虑优化试剂体系和提取步骤。可以试试用试剂盒提取,我们实验室一般用吉恩特的试剂盒,跑电泳的时候基本没有拖尾
问一下,就是,请问电泳DNA是否出现拖尾现象是要怎么判断的?
1. PCR产物出现拖尾的因素有很多,总结为一条,就是非特异性扩增过多。原因可能是:(1) 模板不纯:解决方法,纯化模板 (2) Buffer不合适:解决方法,更换Buffer (3) 退火温度偏低:解决方法,适当提高退火温度 (4) 酶量过多:解决方法,适量用酶,或调换另一种酶 (5) dNTP、Mg2+浓度偏...
总DNA电泳拖尾严重是什么原因
1.电压过大,根据电泳槽设置合适的电压;2.缓冲溶液离子浓度过高,调整盐浓度在0.1mol\/L以下;3.梳子插得过深,样品从胶板下部通过,梳子底部与胶槽应隔1-2mm(限于水平电泳);4.上样量过多,稀释DNA样品浓度或者减少上样量;5.酶切不完全,使用活性酶重新酶切;6.DNA发生了降解,重新提取DNA,并且加入DNase的抑制剂或...
DNA拖尾现象是什么原因
原因有以下:1、 可以考虑是不是样品不纯,目的产物与杂带相差不大,所以要多跑一段时间才有尾巴。参考marker,marker应该不会有。如果有的话说明配胶有问题。2 、琼脂糖检测DNA一般去1~5微升原液,加2微升溴酚蓝便可,注意上样浓度;3、可能是原液浓度太大造成的;4、可能DNA已降解。5、在提取前...
琼脂糖凝胶电泳跑的DNA为什么会拖尾
由于酶量过多或酶的质量差,dNTP浓度过高,Mg2+浓度过高,退火温度过低,循环次数过多,而造成PCR的非特异性产物过多。对策:减少Taq酶的量,或调换另一来源的酶;减少dNTP的浓度;适当降低Mg2+浓度;增加模板量,减少引物的用量,减少循环次数,提高退火温度。琼脂糖的熔点在62〜65°C之间,融化...
跑dna电泳出现拖尾现象,不知道为何?
也可能是受到了空气的污染等,为了检测你的maker是否有问题,可以在同块胶上点上别的MAKER,或者请别人帮你制胶后再跑一下。2.镁离子的浓度问题,镁离子浓度不合适本身就很容易拖尾,前8个样在跑PCR的时候都加了镁离子,而总DNA没有,这也是他们的区别,也可以从这点找找原因。
DNA电泳为什么标记的分子量大了就拖带,什么原因?
一般大分子量是会有些拖尾,但是不会这么严重。可能有以下一些原因:1、电泳电压太高;2、缓冲液放置太久;3、凝胶质量不理想(对你这个结果而言这种可能性不太大);4、凝胶浓度偏高。
DNA电泳时有很长的拖尾是什么原因?
观察MARKER是否拖尾,如果也拖尾的话就是胶或缓冲液的问题了,换新缓冲液试试,还不行就换其它牌子的琼脂糖试试,我以前也拖尾后来换牌子就好了。如果MARKER不拖尾那就是扩增有问题了
pcr产物跑的电泳,为什么DNA都有拖尾
PCR产物电泳拖尾,可能有如下原因:a.模板不纯.b.退火温度偏低.c.酶量过多,dNTP、Mg2+浓度偏高.d.循环次数过多.解决办法:a.纯化模板.b.适当提高退火温度.c.降低酶量,适当降低dNTP和镁离子的浓度.d.减少循环次数